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當光遺傳學遇上電鏡:如何把神經元被“點亮”的一瞬間凍結下來?

更新時間:2026-10-16      點擊次數:63
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2026年諾貝爾生理學或醫學獎,讓“光遺傳學"再次成為生命科學領域的焦點。Karl Deisseroth、Peter Hegemann和Georg Nagel因光控離子通道和光遺傳學相關發現獲獎。這項技術最關鍵的改變之一,是讓科研人員能夠用光,以很高的時間和空間精度控制特定細胞的活動。


但對于神經科學來說,“讓神經元在想要的時刻被激活"只是故事的一半。


另一個問題隨之而來:光脈沖觸發神經活動之后,在隨后短暫的時間窗口里,突觸囊泡、細胞膜以及其他超微結構究竟發生了什么?


傳統電子顯微鏡能夠提供空間分辨率,卻通常看到的是已經固定下來的“靜態結果"。而許多神經活動發生得非常快。于是,一個很自然的技術需求出現了:能不能先精準觸發一個生物學事件,然后在預定的時間點把它立即“凍結",最后再進入電鏡觀察?


這正是“Flash and Freeze"思路的價值所在。


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從“控制神經元",走向“定格神經元"


高壓冷凍(High-Pressure Freezing, HPF)的作用,是快速冷凍固定含水樣本并盡可能保存其超微結構。Leica EM ICE進一步將高壓冷凍與光刺激、電刺激結合,可在關鍵事件發生后進行冷凍固定。


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光,是“開始"的按鈕;

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高壓冷凍,是“暫停"的按鈕;

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電子顯微鏡,則負責觀察被定格下來的結構。


同步光刺激和高壓冷凍,可以在毫秒級時間精度和納米級空間尺度上研究高動態過程,包括突觸神經傳遞過程中發生的結構變化。


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光刺激之后,到底“凍"在哪一刻?


這里真正重要的不是簡單地“照一下光,再把樣品凍起來",而是建立刺激與凍結之間可控的時間關系。


EM ICE將光刺激集成到系統中,可使用藍光、紫外光、綠光、紅光和琥珀光等5種LED模塊;相關光脈沖參數及刺激到凍結的時間關系可以納入實驗設置,并記錄到日志文件。目前可提供的波長分別為450、380、523、660和597 nm。


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這意味著研究者可以圍繞目標生物學事件來設計時間節點,而不是只獲得刺激前與刺激后的兩個終點。



Flash & Freeze,讓突觸活動留下“結構證據"


這一方法在突觸研究中的意義尤其直觀。


徠卡已有應用資料介紹了將光刺激與EM ICE高壓冷凍用于小鼠急性腦片及器官型腦片培養的“Flash and Freeze"工作流。研究首先通過實驗確定刺激條件,再進行光刺激與高壓冷凍,之后經過冷凍置換、包埋、超薄切片和TEM觀察,對突觸囊泡及相關結構進行分析。


也就是說,研究人員嘗試回答的不再只是:“這個突觸長什么樣?"


而進一步變成:“在受到刺激后的這一時刻,突觸正在發生什么?"


這也正是光遺傳學與電鏡制樣技術相遇之后非常值得關注的方向,從對動態過程進行精確操控,到將其中的重要時間節點轉化為可以進一步研究的超微結構信息。



不僅是“凍得快",更重要的是“在正確的時刻凍住"


EM ICE采用無醇冷凍原理,全自動上樣至冷凍過程僅需1秒,同時支持光刺激或電刺激與高壓冷凍結合。對于需要研究動作電位、膜運輸、突觸傳遞以及其他快速動態過程的實驗而言,它提供的核心能力不是單純提高“凍結速度",而是幫助研究者把刺激、時間與超微結構觀察連接起來。


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從今年光遺傳學再次受到全球關注,到“Flash & Freeze"不斷進入突觸和細胞動態研究,一個趨勢正在變得更加清晰:我們不僅希望看見生命結構是什么樣,還希望知道,當生命活動發生的那一瞬間,它究竟是什么樣。


而把那個稍縱即逝的瞬間真正保存下來,或許正是下一張關鍵電鏡圖像開始的地方。


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